Основы диагностики и терапии антифосфолипидного синдрома, страница 11

3.                             Получение плазмы больного, лишенной ПФМ. Для этой цели фильтруют 1,0 мл БТП исследуемого больного через чистый фильтр, удаляя из нее ПФМ (полученная плазма обозначается как проба №3).

4.                         Добавление ПФМ, полученных из контрольной плазмы в профильтрованную плазму больного. Для этого фильтруют 1,0 мл нормальной БТП через чистый фильтр, чем достигается осаждение ПФМ контроля на фильтре. Для удаления остатков плазмы фильтр, с задержанными на нем ПФМ контроля, промывают 3,0 мл буфера. Затем фильтр переворачивают и пропускают через него 1,0 мл плазмы больного, смывая нормальные ПФМ. В результате происходит перемещение осажденных на фильтре нормальных ПФМ в профильтрованную плазму больного (проба № 4).

Ход определения. Инкубируют все четыре пробы в течение 120 мин при комнатной температуре (+18...+25°С), а затем определяют KB свертывания в этих пробах. Для этого 0,1 мл из каждой исследуемой пробы смешивают с 0,1 мл взвеси легкого каолина, инкубируют 3 мин при +37°С, после чего добавляют в смесь 0,1 мл раствора хлорида кальция и регистрируют время свертывания.

KB в пробе №1 обозначают как t1.

KB в пробе №2 обозначают как t2.

KB в пробе №3 обозначают как t3.

KB в пробе №4 обозначают как и.

Оценка результатов. На основе проведенных определений рассчитывают исходную прокоагулянтную активность ПФМ в контрольной плазме (Чй) по формуле1:

X1 ,%= 103.8(lg1-lg2)

Затем также рассчитывают прокоагулянтную активность контрольных ПФМ (Х2) после их инкубации с плазмой больного по фор' Формула рассчитана на основе калибровочных графиков, полученных при исследовании образцов плазмы с разным уровнем прокоагулянтной активности ПФМ.

муле:

Х2,% = 103,8(lgt3-lgt4)+1.

Вычисляют остаточную активность (ОА) контрольных ПФМ в профильтрованной плазме больного по формуле:

eW(%) = l1/l2x100%.

Степень подавления прокоагулянтной активности нормальных ПФМ антителами, содержащимися в плазме больного, соответствует активности волчаночного антикоагулянта в профильтрованной БТП больного. В контрольных исследованиях ОА находится в пределах 85-115%.

Пример. При исследовании по данной методике больного с ВА получены следующие значения KB:

1)              в пробе №1 -152 с (t1,),

2)             в пробе №2 - 84 с (t2),

3)               в пробе №3 - 240 с (t3),

4)               в пробе №4-180 с (t4).

Исходная прокоагулянтная активность ПФМ (Чй) составила:

X1, % = 103.8(lg152-lg84)+1 = 95%

Прокоагулянтная активность ПФМ (Х2) контроля после их инкубации с плазмой больного составила:

X2i  %== 103.8(lg240-lg180)+1 = 30%

Остаточная активность ПФМ контроля оказалась равной:

30

е W(%) = — х 100% = 32%. 95

Результат: анализ на ВА положительный.

2.7. Определение антифосфолипидных антител (к кардиоли-пину, фосфатидилсерину, фосфатидилэтаноламину)

Большинство антифосфолипидных антител, определяющих развитие АФС, принадлежат к классу IgG, реже - IgM или еще реже -IgA. Основная часть этих антител, показывающая при этом наилучшую корреляцию с клинической картиной АФС, относится к классу IgG. Диагностическое значение определения lgM-антител меньшее.

Ниже приводится описание методик иммуноферментного определения аутоантител к фосфатидилсерину и кардиолипину на примере использования диагностикумов "Anti-PhosphatidylSerineIgG/IgM" и "Anti-CardiolipinIgG/IgM" фирмы ВСМ Diagnostics ORGen-Tec (США, Германия).

Принцип. Метод определения АФА основан на принципе твердофазного иммуноферментного анализа. На поверхности лунок мик-ротитровального планшета иммобилизован антиген - фосфатидил-серин (или кардиолипин). При добавлении в лунки разведенной сыворотки больного (калибраторов и контрольных образцов сыворотки) присутствующие в ней антитела связываются с соответствующим антигеном. После инкубации планшет промывают, удаляя несвязанный материал. Связавшиеся с твердой фазой антитела к фосфати-дилсерину определяют, добавляя в лунки меченые пероксидазой антитела против IgG или IgM (в каждом образце необходимо определить оба класса антител)1. В результате после инкубации ферментный конъюгат взаимодействует с антителами соответствующего класса, иммобилизованными на твердой фазе. Не связавшиеся антитела и белки плазмы удаляются промыванием.