D., 1979). В последние годы наибольшие перспективы временного замещения функций несостоятельного органа связывают с применением изолированных гепатоцитов (ИГ) в экстракорпоральном контуре (Маргулис М.С и соавт.,1989; Chang Т.М.С., 1979 - 89; Miura
J. et al., 1986 и др.).
Выделение ИГ обеспечивают за счет коллагеназы в термостабилизированном перфузате. При этом 60-80 % остатются стабильно жизнеспособными, что доказывается не только по отсуствию проникновения красителя (Seglen P.O., 1976), но и способностью ИГ
конъюгировать билирубин, связывать аммиак с последующим превращением его в мочевину, синтезировать и накапливать гликоген, производить кетоновые тела из жирных кислот, осуществлять биотрансформацию ксенобиотиков. Сохраненым оказался важнейший компонент печеночного - синтез белка, в том числе синтез альбумина, холинэстеразы, холестерола, секреция факторов пролиферации, которые могут быть утилизованы поврежденной печенью реципиента. В
частности в перфузате обнаружены и стимулятор регенерации (Eistman B. et al., 1966), а также гепатотопные факторы А и В, способные стимулировать регенерацию поврежденной печени.
Оценка жизнеспособности ИГ в инкубируемых перфузионных системах показала сохранение основных метаболических функций - способности к глюкоронизации и накоплению гликогена, синтезу мочевины и белка, конэюгации свободного билирубина - в течение 8 ч и более. Отчетливое "утомление" изолированных гепатоцитов при стабильной температуре 37 5о 0С, балансе инградиентов в перфузате и высоком рО 42 0 начинается где-то к 12 ч перфузии. Значение экстракорпоральной оксигенации в одном перфузионном контуре связано со значительным потреблением кислорода гепатоцитами, что получило название "ненасытного метаболизма печени" (Бельков А.В.,
Писаревский А.А., 1991).
Существует два аспекта практического использования ИГ в экстракорпоральной детоксикации.
Первый касается 2метода удержания клеток в экстракорпораль 2ном контуре, 0 который возможен в виде двух-трех основных вариантов. Один состоит в том, что ИГ, помещаются в конусовидный ротор фракционатора крови и удерживаются в таком массообменнике, благодаря центробежной силе (Inoue N.,1988); в другом варианте между ИГ и жидкой фазой крови пациента находится полупроницаемая мембрана; в третьем варианте удержания ИГ в потоке в качестве фильтра использовали угольный сорбент и гранулы кварцевого стекла (Маргулис М.С. и соавт, 1989).
Второй аспект использования ИГ состоит в 2независимом от
2забора печени источнике клеток 0для проведении детоксицирующей перфузии за счет создания банка клеток. Наиболее приемлемой оказалась криоконсервация ИГ с длительным хранением в жидком азоте. Исследование показало отсуствие существенных различий фрагментов печени и криоконсервированных ИГ от живых клеток как в морфологическом строении, так в биохимической активности: криоконсервированные клетки также синтезировали глюкозу, мочевину и протромбин. Исследование, проведенное И.И.Шиманко и сотр.
(1989) у больных с печночной недостаточностью выявило высокий лечебный эффект криоконсервированных ИГ. Это позволило сделать вывод о необходимости создания банка криконсервированных ИГ и такая возможность была реализована (Харьков).
Следует отметить, что имеется еще один аспект практического использования ИГ: применение экстракорпоральной детоксикации с ИГ или их пересадка в селезенку больного может стимулировать регенерацию печени, особенно при ее некрозе (Mito M.,
1986), также как использование цитогеля из живых ИГ. Однако, реальные возможности широкого применения органозамещения при печеночно=клеточной несостоятельности пока далеки от запросов интенсивной терапии больных этой категории, находящихся в критической ситуации.
Уважаемый посетитель!
Чтобы распечатать файл, скачайте его (в формате Word).
Ссылка на скачивание - внизу страницы.