Животные для исследования были распределены на 4 группы:
I – 45 крыс с экспериментальным холестазом. У них исследовали кровь, брали участки печени на 5,10, 15 сутки, наблюдали за продолжительностью жизни и состоянием. В каждый срок выводили из опытов 10 животных.
II – 45 крыс с экспериментальным холестазом и подвергнутых действию НИЛИ. У них исследовали кровь, биоптатов печени на 5,10 и 15 сутки, наблюдали за состоянием и продолжительностью жизни. Облучение проводили, начиная с первых суток операции и в последующие дни, соответственно доведя количество сеансов до 5, 10 и 15. Время для забора крови и последующего исследования выбрано с учетом наиболее опасных периодов развития печеночной недостаточности (Рахелис С.Д. с соавт., 1974; Жидовинов Г.И., 1985, 1989). В каждый срок выводили из опытов по 10 животных.
III – 6 здоровых крыс – контроль исходного состояния всех изучаемых показателей на первые и 15 сутки наблюдения;
IY – 4 крысы были подвергнуты 15-кратному действию НИЛИ – с целью контроля действия НИЛИ.
У 15 животных I и II групп (в каждой из них) с экспериментальным холестазом проводилось исследование продолжительности жизни. Распределение животных по группам опытов представлены в таблице 2.
Методы исследования
Экспериментальные методы:
2.2. Методика лазерного облучения
В эксперименте в послеоперационном периоде использовался полупроводниковый арсенид-галлиевый полупроводниковый лазер "Блазтер-4П", с длиной волны 0,89 мкм. Мощность излучения в импульсе 10 мВт, при экспозиции 3 мин на одно поле (облучалось три поля через кожу) в проекции печени. Количество сеансов – от 5 до 15 в зависимости от поставленной задачи в каждой группе опытов.
В ходе эксперименте у животных облучалась область эпигастрия и правого подреберья, начиная с первых суток после операции моделирования холестаза. Сеансы проводились ежедневно, в одно и тоже время.
2.3. Группы эксперимента и методы исследований
Для оценки функционального состояния печени были использованы следующие критерии:
- показатель холестаза: по уровню содержания в крови общей и прямой фракции билирубина мк/моль/час по İendrashic (1937);
- показатель цитолиза клеток печени: по уровню содержания трансаминаз – АЛТ и АСТ мкмоль/мл/час (Френкель[ЛР3] …., Райтман……1957);
- показатель пигментно-детоксикационной функции печени: по уровню содержания в крови непрямой фракции билирубина , ответственного за токсическое действие, (Кобзарева В.И. и соавт., 1978; Колосов И.В. и соавт., 1997) по методу İendrashic (1937);
- показатель синтетической функции печени: по уровню содержания в крови, общего белка.
Для динамического наблюдения за аутоиммунным статусом животных [ЛР4] использованы противоорганные эритроцитарные антигенные диагностикумы (к печени, почке, сердцу, легким, тимусу, желудку, кишечнику) "Step-система", позволяющая выявлять гомологичные аутоантитела в сыворотке. Аутоантитела в сыворотке крови определяли микрометодом в РНГА (реакция непрямой гемаглютинации) в микротитраторе типа «Takachi». Для исследования использовали нативную сыворотку не позднее, чем через 2 дня после ее взятия. Диагностикумы готовились из крови и тканей соответствующих органов крыс «Wistar» В норме аутоантитела отсутствуют или их титр составляет 1:4[ЛР5] .
Уважаемый посетитель!
Чтобы распечатать файл, скачайте его (в формате Word).
Ссылка на скачивание - внизу страницы.