Изучение влияние ионов тяжелых металлов на растение, страница 3

1. Колебательное движение свойственно, например, клеткам водоросли Spirogyra и водного гриба Achlya. При этом движении нет упорядоченного перемещения клеточных компонентов: одни частицы движутся к центру, другие — к периферии, третьих находятся в покое.

2.  Циркуляционное движение характерно для клеток, имеющих протоплазматические тяжи, пересекающие вакуоль, например для волосков огурцов, тычиночных нитей традесканции и т.д. Потоки цитоплазмы, проходящие через вакуоль, все время меняют свой вид.

3.  Ротационное движение цитоплазмы наблюдается в  клетках с большой центральной вакуолью, когда цитоплазма находится на периферии клетки и движется, подобно приводному ремню. Его удобно наблюдать в клетках водных растений, например харовых водорослей.

4.  Фонтанирующее движение цитоплазмы свойственно клеткам, обладающим верхушечным ростом: корневым волоскам, пыльцевым трубкам. В толстом центральном тяже протоплазма движется к кончику клетки (или к ее основанию), а постепный слой — в обратном направлении.

5.  В гифах грибов цитоплазма движется по типу прилива. Движение происходит рывками по направлению к растущей верхушке гифы.

6.     Челночное движение цитоплазмы наблюдается у миксомицетов. В одном из направлений постепенно возрастает скорость тока цитоплазмы, после достижения максимальной скорости наступает резкая остановка и начинается движение в противоположном направлении.[1]

Для рода нитевидных водорослей осциллатория характерно осциллаторное движение, которое связано уже не только с движением цитоплазмы, но и с движением самой нити водоросли: копчик нити совершает качательные движения, сопровождающиеся вращением нити вокруг собственной оси и поступательным движением нити. Водоросли могут таким образом перемещаться на стенки сосуда из воды или расползаться в капле воды.

Изучение движения цитоплазмы затруднено тем, что этот процесс очень чувствителен к воздействиям оператора. В большинстве клеток движение цитоплазмы останавливается при надавливании и резких движениях. У ряда объектов, например в клетках колеоптилей, движение цитоплазмы наблюдается только при хорошей аэрации ткани, которая достигается непрерывным пропусканием воды под покровное стекло. Ухудшение аэрации приводит к остановке движения цитоплазмы. Для наблюдения движения в клетках листьев многих растений применяют способы увеличения прозрачности тканей путем осторожной инфильтрации вазелиновым маслом и т. д.

Скорость движения цитоплазмы измеряют по перемещению в поле зрения микроскопа хорошо заметных частиц, не обладающих собственным движением, а перемещающихся с током цитоплазмы.

Ротационное движение цитоплазмы активно изучается у клеток междоузлий харовых водорослей. В этих клетках движение осуществляется вдоль клеточных стенок. Слой цитоплазмы, подстилающий плазмалемму (кортикальный слой, эктоплазма), практически неподвижен. Вдоль его внутренней поверхности скользит эндоплазма с плотностью 1,014— 1,015 г-см3. Средняя скорость движения эндоплазмы у нител-лы составляет 50 мкм-с, а движущая сила тока равна 0,1—0,2 Па. Такой ток цитоплазмы переносит в секунде от десятков до сотен кубических пиколитров цитоплазмы.

Движение цитоплазмы в клетках различных растений по-разному отвечает на недостаток кислорода. Очень чувствительны к недостатку О2 клетки колеоптилей овса и кукурузы, а в клетках волосков тычиночных нитей традесканции движение цитоплазмы не меняется при изменении содержания О2 от 1,5 до 100%.

Движение цитоплазмы в клетках колеоптилей овса обратимо подавляется динитрофенолом (0,05—5 ммоль/л). Ингибиторы гликолиза — фторид (1 ммоль/л) и иодацетат (0,05 ммоль/л)— устраняют ускорение движения цитоплазмы, вызванное ауксином, в этих клетках, но не влияют на скорость движения без ауксина. В клетках ацетабулярии экзогенный АТФ (0,5 ммоль/л) лишь кратковременно (в течение 10 мин) активирует движение цитоплазмы. Низкие положительные температуры и резкая смена температур с градиентом в 13—15° вызывают временную остановку движения цитоплазмы у клеток нителлы. Иногда наблюдается постепенное изменение скорости движения. Прохождение импульса  ПД по клетке нителлы сопровождается обратимым желатинированием цитоплазмы, вызванным локальным входом ионов кальция и перестройкой структуры актиноподобных белков в цитоплазме. Временная остановка движения цитоплазмы является характерной реакцией клетки на раздражение.