Скорость заживления раны
Для анализа заживления раны нами использовалось динамическое измерение площади раневой поверхности по методу Л. Н. Поповой (1942). На рану накладывали стерильную целлофановую пластинку и наносили на нее контуры раны. Рисунок переносили на миллиметровую бумагу и подсчитывали площадь раны по формуле: S= (S – Sn)x100/ S x t, где S- величина площади раны при предыдущем измерении, Sn- величина площади раны в настоящий момент, t- число дней между измерениями.
Оксигемометрия
Для определения насыщения гемоглобина кислородом в тканях в области ран конечностей мы использовали пульсоксиметр фирмы NELLCOR PURITAN BENNET. Датчик одевался на 2-ой палец исследуемой конечности и показания выводились на переднюю панель монитора. Исследования проводились на одноименных здоровых конечностях тех же пациентов.
Материалы и методы исследования в эксперименте
Исследования проводились на кафедре микробиологии БГМУ города Уфы, согласно приказу МЗ СССР № 535 от 22 апреля 1985г. «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений». Качественный анализ микрофлоры, а также чувствительность ее к антибиотикам проводили в бактериологической лаборатории РКБ им. Г. Г. Куватова.
Материалом для бактериологических исследований служило содержимое гнойных ран. Проводили качественное и количественное определение микроорганизмов.
В последние годы имеет место увеличение количества больных с нагноительными заболеваниями мягких тканей, у которых возбудителем является убиквитарная грамположительная и грамотрицательная микробная флора. Бактерии, выделенные из ран, обладают рядом биологических свойств, обусловливающих клиническое течение болезни.
В развитии кокковой инфекции ведущее значение занимают их плазмокоагулазная и гемолитическая активности, которые защищают грамположительную флору от фагоцитоза путем связывания плазмы.
Основными факторами патогенности грамотрицательной флоры являются их альфа-гемолитическая и энтерогемолитическая активности, а также LT-энтеротоксигенность.
Нами проводилось изучение следующих биологических свойств: альфа-гемолитической и плазмокоагулазной активности, термолабильной (LT) энтеротоксигенности.
Альфа-гемолитическую активность определяли на 2% агаре Хоттингера, который является мясопептонным агаром, содержащим 5% суспензию эритроцитов кролика или 0 (I) группы человека. При этом суточную агаровую культуру засевали уколом на агар Хоттингера и инкубировали в термостате при температуре 37оС в течение 24 часов. Степень альфа-гемолитической активности определяли по зоне гемолиза (5-8мм – высокая; 3-5мм – средняя; 1-3мм – слабая; отсутствие гемолиза – отрицательная).
Для определения плазмокоагулазной активности бактериальной флоры одну петлю чистой культуры вносили в стерильные пробирки, содержащие по 0,5мл свежей плазмы кроликов, и помещали их в термостат. Результат проверяли через 30 минут, 2 часа, 4 часа и на другой день. Положительный результат характеризуется уплотнением плазмы.
Определение термолабильной энтеротоксигенности бактериальной флоры проводили на тесте отека лап мышей, разработанным Вартанян Ю. П. и соавт. Вводили 0,05мл центрифугата 20-часовой бульонной культуры в подушечку левой задней лапы белых мышей. Через 24 часа мышей «выводили из опыта». По разнице веса ампутированных по голеностопному суставу опытной (левой) и контрольной (правой) лап, взвешенных на торсионных весах, высчитывали показатель отека лап в мг. За положительный принимали показатель в 65мг и более.
Изучение вирулентности бактериальной флоры проводили методом интраназального заражения белых мышей массой 16 – 18 грамм («Легочная модель» Войно-Ясенецкой,1957).
Под легким эфирным наркозом группе мышей через носовые ходы пипеткой вводили 0,05 мл 18-часовой бульонной культуры (6 – 8 х 106 штаммов в 1 мл бульона). Часть мышей тут же забивали, и растирали в стерильных ступках со стеклянным песком в физиологическом растворе (1мл) извлеченные из грудной клетки легкие. Определяли среднее количество бактерий, попавших в легкие при инфицировании высевом соответствующих разведений на 2% агар Хоттингера. Одновременно следили за поведением остальных животных. Штаммы, которые вызывают в первые 3 – 5 часов гибель 50% и более экспериментальных животных, считали высоковирулентными, в 12 – 18 часов – средней вирулентности, 36 – 48 часов – слабовирулентными, а не вызывающие изменения в поведении животных – авирулентными.
МЕТОДЫ ЛЕЧЕНИЯ БОЛЬНЫХ
В зависимости от применявшегося метода лечения гнойных ран, больные были распределены на 2 группы (контрольная и основная). Больные в группах были сопоставимы по полу и возрасту.
В первой группе (55 человек) лечение гнойных ран проводилось традиционными методами. Рану обрабатывали 3% раствором перекиси водорода, механическим путем удаляли некротические ткани, затем накладывали повязки с растворами антисептиков, гидрофильными мазями (левосин, левомеколь, диоксиколь) или, при наличии обильного количества некротических масс, протеолитическими ферментами (трипсин, химотрипсин, химопсин). В фазе регенерации применяли стимулирующие мази (метилурациловая, актовегиновая и др.).
Во второй группе (55 человек), наряду с традиционными методами лечения, применяли аллотрансплантат, импрегнированный антибиотиками, изготовленный по технологии, разработанной во Всероссийском центре пластической хирургии глаза для трансплантатов серии «Аллоплант».
Трансплантаты изготавливаются из различных соединительно-тканных образований трупа человека, согласно ТУ 42 – 2 – 537 – 87, разрешены к применению Минздравом СССР (регистрационное удостоверение № 87/901 – 87 от 22 июля 1987года).
В последние годы в центре освоен выпуск более 50 видов аллотрансплантатов. Специальная обработка препаратов серии «Аллоплант» обуславливает их низкую антигенность и способность приживать без применения иммунодепрессантов.
Стимулятор регенерации серии «Аллоплант» представляет собой продукт химической обработки аллогенных тканей с последующей дезинтеграцией, лиофилизацией и гамма стерилизацией. Он содержит коллаген, протеогликаны, гликопротеины, гликозаминогликаны и выпускается в виде мелкодисперсного порошка во флаконах емкостью 5 мл. В качестве антибактериального компонента применялись антибиотики группы макролидов (эритромицин), аминогликозидов (гентамицин) и цефалоспоринов (цефалотин). Выбор последних осуществлялся в зависимости от данных бактериологического исследования.
Рана очищалась от гноя, высушивалась, и в нее засыпался порошок аллотрансплантата. Перевязки проводились ежедневно, а по мере очищения раны – через день.
Статистическая обработка
Статистическую обработку полученных данных проводили, используя статистическую программу расчета показателя существенности различий НИИФ «ЭКОС».
Уважаемый посетитель!
Чтобы распечатать файл, скачайте его (в формате Word).
Ссылка на скачивание - внизу страницы.